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MS spectrométrie de masse

Object du spectrométrie de masse était de peser une molécule. pour les dissocier uniquement rendu possible par l'état gazeux

Ionisation Généralement des électrons sont accélérés et lors de la collision avec des particules arraches un électron.

20eV arrache les électrons sur la couche de valence 70eV arrache se des liaisons il y a généralement fragmentation

Principes de la spectrométrie de masse (MS)

La spectrométrie de masse s'appuie sur l'analyse de la trajectoire de particules chargées soumises à un champ électromagnétique. Leur trajectoire dépend de deux facteurs :

  • Leur charge.
  • Leur masse.

Le mouvement des charges modifie réciproquement le champ électromagnétique. Ce sont ces variations qui sont mesurées et qui fournissent les informations sur les particules en mouvement (vitesse et trajectoire). L'appareil est sensible à de faibles variations.

La précision de la masse est de l'ordre de 0,2 Da (Dalton). Par rapport à la masse d'un atome d'hydrogène qui est de 1 Da. La sensibilité est suffisante pour distinguer des isotopes.

Note

Ainsi, seules les molécules chargées peuvent être analysées.

Warning

Le spectromètre n'est sensible pas de manière équivalente à toutes les molécules. Cette variation constitue une difficulté pour la quantification absolue. Il est nécessaire de passer par une gamme étalon.

Warning

La quantification relative ne fonctionne que lorsque l'on est dans des conditions comparables.

Utilités :

  • Le listage de molécules.
  • La quantification relative ou absolue.

Pour faciliter la détection des molécules, des charges sont enlevées ou rajoutées afin de maximiser le nombre de charges totales (positif ou négatif, cation (+) ou anion (-)).

Note

La qualité des résultats et leur pertinence dépendent grandement de la qualité de l'échantillon.

Fonctionnement technique du spectromètre de masse

Le spectromètre est constitué de trois unités :

  • La source d'ions.
  • L'analyseur et le détecteur. C'est l'analyseur qui transforme les orbites en spectre (m/z) grâce à la transformation de Fourriers.

La source d'ions

Il existe plusieurs types de sources d'ions pour charger les particules :

  • Ionisation electrospray ESI. Un gaz est nébulisé autour de l'échantillon. Il est adapté aux échantillons liquides et il permet du haut débit.
  • MALDI une matrice solide désintégré par l'utilisation d'un laser.

Source douce pression atmosphérique.

Ionisation electrospray (ESI)

ESI gaz nébulisation. Les gouttelettes situés autour des molécules d'intérêt sont éjectés par un courant et chargées.

Dissociation des molécules par la répulsion d'électrique dû aux charges.

Analyseur de trajectoire

Les types de disposifs permettant de mesurer le \(m/z\) :

  • Le quadripôle analyse la stabilité de la trajectoire. Les 20 ions plus intenses sont ensuite analysés en MS/MS. Les autres molécules éjectées par des variations du champs électrique.
  • L'orbitrap.
  • time of fly (TOF).

Quadripôle

Le quadripôle analyse la stabilité de la trajectoire. Les 20 ions plus intenses sont ensuite analysés en MS/MS. Les autres molécules éjectées par des variations du champs électrique.

Orbitrap

Deux électrodes en

La fragmentation permet de déterminer la structure chimique des ions.

\[f = \frac{1}{2 \cdot \pi \cdot \sqrt{k \cdot \frac{m}{z}}}\]

avec k la courbure de champs de l'électrode et f la fréquence de rotation de l'ion.

La forme centrifuge est compensée par la force électrostatique.

Le courant induit par les oscillations.

Les oscillations sont transformées en spectre par transformation de Fourier.

La tension est un quadro log (une imbrication de quatre logs). Elle offre une bonne différenciation sur les m/z proches.

Interprétation des spectres MS

C'est l'analyseur qui transforme les données de trajectoires en spectre.

Les données obtenues après l'analyse des trajectoires forment un spectre avec :

  • En abscisse, \(\frac{m}{z}\)\(m\) poids moléculaire apparent (Da) et $$ la charge.
  • En ordonnée, l'intensité du signal.

Note

L'intensité du signale dépend de la quantité de protéines présentes dans l'échantillon.

La charge

La charge est déterminée par la différence entre deux pics isotopiques : \(\Delta = \frac{1}{z}\) avec \(z\) la charge.

Isotope molécule ayant un ou plusieurs neutrons supplémentaires.

Composé radioactif isotope non stable.

Quantification absolue

La quantification absolue passe par une gamme étalon avec un marquage à l'isotope. Les échantillons d'intérêts sont reportés sur une courbe étalon.


Protéomique en MS

Glossaire

  • PTM post traductionnel Modifications.
  • Nano LC (ou HPLC) nano-chromatographie en phase liquide.
  • PSM spectre assimilé à un peptide (Peptid Spectrum Match)

Nature de l'échantillon de la nature de la molécule les plus + protéines \(H^+\). Jusqu'à z. Azote et oxygène doublet non liant donneur.

Les protéines peuvent être des molécules compliquées. La chaine d'acides aminés. On réalise généralement une découpe des protéines. C'est la présence de chaine peptides avec des séquences uniques dans chaque type de protéines qui permet de remonter au type de la protéine.

Comme la plupart des appareils de haute précision, ils possèdent une plage de mesure avec des conditions expérimentales optimales. Dans le cadre d'analyser des chaines peptidiques.

La précision des mesures réalisés permet une polyvalence dans les réponse que peut apporter une analyse par spectrométrie :

  • Modifications post traductionnelles
  • La détection des protéines isomères.

On réalise généralement une découpe des protéines en peptides par l'utilisation d'endopeptidase (par exemple, la trypsine). Les endopeptidases utilisées possèdent des sites de clivage spécifique.

Nécessite de dénaturer la protéine notamment de la suppression des ponts disulfures. On ajoute un groupement pour empêcher leur reformation.

Préparation des échantillons pour la spectrométrie de masse

Les échantillons sont préparés pour faciliter la collecte des données par l'analyseur en réduisant la variabilité des molécules (différences de taille, de masse...) mais également la lecture et l'interprétation des résultats.

Pour faciliter l'analyse des protéines par MS :

  1. Les protéines sont purifiées généralement par gel SDS.
  2. Les protéines sont découpées en peptides.
  3. Les peptides sont analysés en sortie de chromatographie. Ils sont élués au fur et à mesure par des propriétés physico-chimiques proches.

Note

La chromatogrpahie est généralement en phase inverse (phase stationnaire eau et acétonitrile pour la phase mobile) sur colonne de silice. En présence d'eau, la silice devient perd en polarité. Le décrochage des molécules se fait par compétition. les peptides éluées sont alors de plus en plus hydrophobe.

La chromatographie

Fragmentation des protéines par digestion enzymatique

Les protéines fragmentées sont découpées en peptides notamment avec la trypsine. Cette peptidase est extrêmement spécifique à son site de clivage et très efficace, elle rate peu de sites.

Note

Le découpage des protéines par les protéases complexifie l'échantillon (nombre de molécules beaucoup important) mais cela diminue la complexité du spectre après la fragmentation (les fragments sont suffisamment petits pour être facile à analyser).

Chromatographie

La chromatographie permet de Fractionner l'échantillon. Cela facilite l'analyse (à la fois pour le spectromètre mais aussi pour l'utilisateur). Les molécules sont analysées par groupe partageant avec des propriétés chimiques très proches.

Note

La chromatographie permet aussi de retirer les sels.

FAIM

Le FAIM est module supplémentaire qui ajoute un filtre supplémentaire à la sortie du spray. Il permet de filtrer les ions en fonction de leur charge.

Par exemple il permet d'éliminer les ions mono-chargés qui généralement ne sont pas des protéines.